ขอขอบคุณที่เยี่ยมชม Nature.comเวอร์ชันเบราว์เซอร์ที่คุณใช้มีการรองรับ CSS อย่างจำกัดเพื่อประสบการณ์ที่ดีที่สุด เราขอแนะนำให้คุณใช้เบราว์เซอร์ที่อัปเดต (หรือปิดใช้งานโหมดความเข้ากันได้ใน Internet Explorer)ในระหว่างนี้ เพื่อให้มั่นใจว่าได้รับการสนับสนุนอย่างต่อเนื่อง เราจะเรนเดอร์ไซต์โดยไม่มีสไตล์และ JavaScript
การกัดกร่อนของจุลินทรีย์ (MIC) เป็นปัญหาร้ายแรงในหลายอุตสาหกรรม เนื่องจากสามารถนำไปสู่ความสูญเสียทางเศรษฐกิจมหาศาลได้เหล็กกล้าไร้สนิมซุปเปอร์ดูเพล็กซ์ 2707 (2707 HDSS) ใช้ในสภาพแวดล้อมทางทะเลเนื่องจากมีความทนทานต่อสารเคมีที่ดีเยี่ยมอย่างไรก็ตาม ยังไม่มีการทดลองแสดงการต้านทานต่อ MICการศึกษานี้ตรวจสอบพฤติกรรมของ MIC 2707 HDSS ที่เกิดจากแบคทีเรียแอโรบิกในทะเล Pseudomonas aeruginosaการวิเคราะห์ทางเคมีไฟฟ้าแสดงให้เห็นว่าการมีอยู่ของฟิล์มชีวะ Pseudomonas aeruginosa ในตัวกลาง 2216E จะเกิดการเปลี่ยนแปลงเชิงบวกในศักยภาพในการกัดกร่อนและความหนาแน่นกระแสการกัดกร่อนที่เพิ่มขึ้นจะเกิดขึ้นการวิเคราะห์เอ็กซ์เรย์โฟโตอิเล็กตรอนสเปกโทรสโกปี (XPS) แสดงให้เห็นว่าปริมาณ Cr บนพื้นผิวของตัวอย่างใต้แผ่นชีวะลดลงการวิเคราะห์ด้วยสายตาของหลุมแสดงให้เห็นว่าฟิล์มชีวะของ P. aeruginosa สร้างความลึกของหลุมสูงสุดที่ 0.69 µm ในระหว่าง 14 วันของการฟักตัวแม้ว่าจะมีขนาดเล็ก แต่ก็บ่งชี้ว่า 2707 HDSS ไม่ได้มีภูมิต้านทานต่อ MIC ของแผ่นชีวะของ P. aeruginosa อย่างสมบูรณ์
เหล็กกล้าไร้สนิมดูเพล็กซ์ (DSS) ถูกนำมาใช้กันอย่างแพร่หลายในอุตสาหกรรมต่างๆ เนื่องจากมีการผสมผสานที่ลงตัวระหว่างคุณสมบัติทางกลที่ดีเยี่ยมและความต้านทานการกัดกร่อน1,2อย่างไรก็ตาม การเกิดรูพรุนเฉพาะจุดยังคงเกิดขึ้นและส่งผลต่อความสมบูรณ์ของเหล็กนี้3,4DSS ไม่ทนต่อการกัดกร่อนของจุลินทรีย์ (MIC)5,6แม้จะมีการใช้งาน DSS ที่หลากหลาย แต่ก็ยังมีสภาพแวดล้อมที่ความต้านทานการกัดกร่อนของ DSS ไม่เพียงพอสำหรับการใช้งานในระยะยาวซึ่งหมายความว่าจำเป็นต้องใช้วัสดุที่มีราคาแพงกว่าและมีความต้านทานการกัดกร่อนสูงกว่าJeon และคณะ พบว่าแม้แต่เหล็กกล้าไร้สนิมซูเปอร์ดูเพล็กซ์ (SDSS) ก็มีข้อจำกัดบางประการในแง่ของความต้านทานการกัดกร่อนดังนั้นในบางกรณี จำเป็นต้องใช้เหล็กกล้าไร้สนิมซูเปอร์ดูเพล็กซ์ (HDSS) ที่มีความต้านทานการกัดกร่อนสูงกว่าสิ่งนี้นำไปสู่การพัฒนา HDSS ที่มีอัลลอยด์สูง
ความต้านทานการกัดกร่อน DSS ขึ้นอยู่กับอัตราส่วนของเฟสอัลฟาและแกมมา และจะหมดไปในบริเวณ Cr, Mo และ W 8, 9, 10 ที่อยู่ติดกับเฟสที่สองHDSS มีปริมาณ Cr, Mo และ N11 สูง จึงมีความทนทานต่อการกัดกร่อนดีเยี่ยม และมีค่าสูง (45-50) ของค่าความต้านทานการเกิดรูพรุน (PREN) ที่เทียบเท่ากัน ซึ่งกำหนดโดย wt.% Cr + 3.3 (wt.% Mo + 0.5 น้ำหนัก .%W) + 16% น้ำหนักน12.ความต้านทานการกัดกร่อนที่ดีเยี่ยมขึ้นอยู่กับองค์ประกอบที่สมดุลซึ่งมีเฟสเฟอร์ริติก (α) ประมาณ 50% และออสเทนนิติก (γ) 50%HDSS มีคุณสมบัติเชิงกลที่ดีกว่าและมีความทนทานต่อการกัดกร่อนของคลอไรด์สูงกว่าความต้านทานการกัดกร่อนที่ได้รับการปรับปรุงช่วยขยายการใช้ HDSS ในสภาพแวดล้อมที่มีคลอไรด์ที่รุนแรงมากขึ้น เช่น สภาพแวดล้อมทางทะเล
MIC เป็นปัญหาสำคัญในหลายอุตสาหกรรม เช่น อุตสาหกรรมน้ำมันและก๊าซ และน้ำ14MIC คิดเป็น 20% ของความเสียหายจากการกัดกร่อนทั้งหมด15MIC คือการกัดกร่อนทางเคมีไฟฟ้าชีวภาพที่สามารถสังเกตได้ในหลายสภาพแวดล้อมแผ่นชีวะที่เกิดขึ้นบนพื้นผิวโลหะจะเปลี่ยนสภาวะทางเคมีไฟฟ้า ซึ่งส่งผลต่อกระบวนการกัดกร่อนเป็นที่เชื่อกันอย่างกว้างขวางว่าการกัดกร่อนของ MIC เกิดจากแผ่นชีวะจุลินทรีย์ที่ใช้พลังงานไฟฟ้าจะกินโลหะเพื่อให้ได้พลังงานที่จำเป็นต่อการดำรงชีวิต17การศึกษา MIC ล่าสุดแสดงให้เห็นว่า EET (การถ่ายโอนอิเล็กตรอนนอกเซลล์) เป็นปัจจัยจำกัดอัตราใน MIC ที่เกิดจากจุลินทรีย์ที่เป็นไฟฟ้าจางและคณะ18 แสดงให้เห็นว่าตัวกลางอิเล็กตรอนเร่งการถ่ายโอนอิเล็กตรอนระหว่างเซลล์ Desulfovibrio sessificans และเหล็กกล้าไร้สนิม 304 ส่งผลให้เกิดการโจมตี MIC ที่รุนแรงยิ่งขึ้นแอนนิ่ง และคณะ19 และเวนซลาฟฟ์ และคณะฉบับที่ 20 ได้แสดงให้เห็นว่าแผ่นชีวะของแบคทีเรียลดซัลเฟตที่มีฤทธิ์กัดกร่อน (SRB) สามารถดูดซับอิเล็กตรอนจากพื้นผิวโลหะได้โดยตรง ส่งผลให้เกิดรูพรุนอย่างรุนแรง
เป็นที่ทราบกันว่า DSS มีความไวต่อ MIC ในสื่อที่มี SRB, แบคทีเรียลดธาตุเหล็ก (IRB) ฯลฯ 21แบคทีเรียเหล่านี้ทำให้เกิดรูพรุนเฉพาะที่บนพื้นผิวของ DSS ภายใต้แผ่นชีวะHDSS24 MIC ต่างจาก DSS ตรงที่ไม่เป็นที่รู้จัก
Pseudomonas aeruginosa เป็นแบคทีเรียรูปแท่งแกรมลบ เคลื่อนที่ได้ และมีการกระจายอย่างกว้างขวางในธรรมชาติPseudomonas aeruginosa ยังเป็นกลุ่มจุลินทรีย์ที่สำคัญในสภาพแวดล้อมทางทะเล ส่งผลให้ความเข้มข้นของ MIC เพิ่มขึ้นPseudomonas มีส่วนร่วมอย่างแข็งขันในกระบวนการกัดกร่อน และได้รับการยอมรับว่าเป็นผู้บุกเบิกอาณานิคมในระหว่างการก่อตัวของฟิล์มชีวะมหาต และคณะ28 และหยวน และคณะฉบับที่ 29 แสดงให้เห็นว่า Pseudomonas aeruginosa มีแนวโน้มที่จะเพิ่มอัตราการกัดกร่อนของเหล็กเหนียวและโลหะผสมในสภาพแวดล้อมทางน้ำ
วัตถุประสงค์หลักของงานนี้คือเพื่อตรวจสอบคุณสมบัติของ MIC 2707 HDSS ที่เกิดจากแบคทีเรียแอโรบิกในทะเล Pseudomonas aeruginosa โดยใช้วิธีเคมีไฟฟ้า วิธีวิเคราะห์พื้นผิว และการวิเคราะห์ผลิตภัณฑ์การกัดกร่อนมีการศึกษาเคมีไฟฟ้า รวมถึงศักย์ไฟฟ้าของวงจรเปิด (OCP) ความต้านทานโพลาไรเซชันเชิงเส้น (LPR) สเปกโทรสโกปีอิมพีแดนซ์เคมีไฟฟ้า (EIS) และโพลาไรซ์แบบไดนามิกที่อาจเกิดขึ้น เพื่อศึกษาพฤติกรรมของ MIC 2707 HDSSการวิเคราะห์การกระจายพลังงานสเปกโตรเมตริก (EDS) ดำเนินการเพื่อตรวจจับองค์ประกอบทางเคมีบนพื้นผิวที่สึกกร่อนนอกจากนี้ X-ray photoelectron spectroscopy (XPS) ยังถูกนำมาใช้เพื่อตรวจสอบความเสถียรของการสร้างฟิล์มออกไซด์ภายใต้อิทธิพลของสภาพแวดล้อมทางทะเลที่มี Pseudomonas aeruginosaวัดความลึกของหลุมด้วยกล้องจุลทรรศน์เลเซอร์สแกนแบบคอนโฟคอล (CLSM)
ตารางที่ 1 แสดงองค์ประกอบทางเคมีของ 2707 HDSSตารางที่ 2 แสดงให้เห็นว่า 2707 HDSS มีคุณสมบัติเชิงกลที่ดีเยี่ยมด้วยความแข็งแรงของผลผลิตที่ 650 MPaบนรูปภาพที่ 1 แสดงโครงสร้างจุลภาคเชิงแสงของสารละลาย 2707 HDSS ที่ผ่านการอบด้วยความร้อนในโครงสร้างจุลภาคที่มีเฟสออสเทนไนต์ประมาณ 50% และเฟสเฟอร์ไรต์ 50% จะมองเห็นแถบยาวของเฟสออสเทนไนต์และเฟสเฟอร์ไรต์ที่ไม่มีเฟสรองได้
บนรูป2a แสดงศักยภาพของวงจรเปิด (Eocp) เทียบกับเวลาเปิดรับแสงสำหรับ 2707 HDSS ในอาหารเลี้ยงเชื้อที่ไม่มีชีวิต 2216E และน้ำซุป P. aeruginosa เป็นเวลา 14 วันที่ 37°Cแสดงให้เห็นว่าการเปลี่ยนแปลงที่ใหญ่ที่สุดและสำคัญที่สุดใน Eocp เกิดขึ้นภายใน 24 ชั่วโมงแรกค่า Eocp ในทั้งสองกรณีสูงสุดที่ -145 mV (เทียบกับ SCE) ประมาณ 16 ชั่วโมง จากนั้นลดลงอย่างรวดเร็วถึง -477 mV (เทียบกับ SCE) และ -236 mV (เทียบกับ SCE) สำหรับตัวอย่างที่ไม่มีชีวิตและคูปอง Pseudomonas aeruginosa ตามลำดับ)หลังจากผ่านไป 24 ชั่วโมง ค่า Eocp 2707 HDSS สำหรับ P. aeruginosa ค่อนข้างคงที่ที่ -228 มิลลิโวลต์ (เทียบกับ SCE) ในขณะที่ค่าที่สอดคล้องกันสำหรับตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีวภาพอยู่ที่ประมาณ -442 มิลลิโวลต์ (เปรียบเทียบกับ SCE)Eocp ต่อหน้า P. aeruginosa ค่อนข้างต่ำ
การศึกษาทางเคมีไฟฟ้าของตัวอย่าง HDSS 2,707 ตัวอย่างในตัวกลางที่ไม่มีชีวิตและน้ำซุป Pseudomonas aeruginosa ที่อุณหภูมิ 37 °C:
(a) Eocp เป็นฟังก์ชันของเวลาเปิดรับแสง (b) เส้นโค้งโพลาไรเซชันในวันที่ 14 (c) Rp เป็นฟังก์ชันของเวลาเปิดรับแสง และ (d) icorr เป็นฟังก์ชันของเวลาเปิดรับแสง
ตารางที่ 3 แสดงพารามิเตอร์การกัดกร่อนทางเคมีไฟฟ้าของตัวอย่าง HDSS 2707 ตัวอย่างที่สัมผัสกับอาหารเลี้ยงเชื้อที่เพาะเลี้ยงด้วยเชื้อจุลินทรีย์และเชื้อ Pseudomonas aeruginosa ในช่วงเวลา 14 วันแทนเจนต์ของเส้นโค้งแอโนดและแคโทดถูกคาดการณ์เพื่อให้ได้จุดตัดที่ให้ความหนาแน่นกระแสการกัดกร่อน (icorr) ศักยภาพในการกัดกร่อน (Ecorr) และความชัน Tafel (βαและ βc) ตามวิธีมาตรฐาน
ดังแสดงในรูป2b การเลื่อนขึ้นของเส้นโค้ง P. aeruginosa ส่งผลให้ Ecorr เพิ่มขึ้นเมื่อเปรียบเทียบกับกราฟ abioticค่า icorr ซึ่งเป็นสัดส่วนกับอัตราการกัดกร่อน เพิ่มขึ้นเป็น 0.328 µA cm-2 ในตัวอย่าง Pseudomonas aeruginosa ซึ่งมากกว่าในตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีวภาพถึงสี่เท่า (0.087 µA cm-2)
LPR เป็นวิธีเคมีไฟฟ้าแบบไม่ทำลายแบบคลาสสิกสำหรับการวิเคราะห์การกัดกร่อนอย่างรวดเร็วมันยังถูกใช้ในการศึกษา MIC32 ด้วยบนรูป2c แสดงความต้านทานโพลาไรเซชัน (Rp) เป็นฟังก์ชันของเวลาเปิดรับแสงค่า Rp ที่สูงขึ้นหมายถึงการกัดกร่อนน้อยลงภายใน 24 ชั่วโมงแรก HDSS มีมูลค่า Rp 2,707 ถึงจุดสูงสุดที่ 1,955 kΩ cm2 สำหรับตัวอย่างที่ไม่มีชีวะ และ 1,429 kΩ cm2 สำหรับตัวอย่าง Pseudomonas aeruginosaรูปที่ 2c ยังแสดงให้เห็นว่าค่า Rp ลดลงอย่างรวดเร็วหลังจากผ่านไปหนึ่งวัน และยังคงไม่เปลี่ยนแปลงค่อนข้างมากในช่วง 13 วันข้างหน้าค่า Rp ของตัวอย่าง Pseudomonas aeruginosa อยู่ที่ประมาณ 40 kΩ cm2 ซึ่งต่ำกว่าค่า 450 kΩ cm2 ของตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีวภาพมาก
ค่าของ icorr แปรผันตามอัตราการกัดกร่อนสม่ำเสมอค่าของมันสามารถคำนวณได้จากสมการสเติร์น-กิริต่อไปนี้:
ตามที่ Zoe และคณะ33 ค่าทั่วไปของความชันทาเฟล B ในงานนี้ถือเป็น 26 มิลลิโวลต์/ธันวาคมรูปที่ 2d แสดงให้เห็นว่า icorr ของตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีวภาพ 2707 ยังคงค่อนข้างคงที่ ในขณะที่ตัวอย่าง P. aeruginosa มีความผันผวนอย่างมากหลังจาก 24 ชั่วโมงแรกค่า icorr ของตัวอย่าง P. aeruginosa มีลำดับความสำคัญสูงกว่าค่าควบคุมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพแนวโน้มนี้สอดคล้องกับผลลัพธ์ของการต้านทานโพลาไรเซชัน
EIS เป็นอีกวิธีหนึ่งที่ไม่ทำลายซึ่งใช้ในการระบุลักษณะปฏิกิริยาเคมีไฟฟ้าบนพื้นผิวที่สึกกร่อนสเปกตรัมความต้านทานและค่าความจุที่คำนวณได้ของตัวอย่างที่สัมผัสกับสภาพแวดล้อมที่ไม่มีสิ่งมีชีวิตและสารละลาย Pseudomonas aeruginosa, ความต้านทานของฟิล์มพาสซีฟ/ฟิล์มชีวภาพ Rb ที่เกิดขึ้นบนพื้นผิวตัวอย่าง, ความต้านทานการถ่ายโอนประจุ Rct, ความจุไฟฟ้าสองชั้น Cdl (EDL) และพารามิเตอร์องค์ประกอบเฟส QCPE คงที่ (ซีพีอี).พารามิเตอร์เหล่านี้ได้รับการวิเคราะห์เพิ่มเติมโดยปรับข้อมูลให้เหมาะสมโดยใช้แบบจำลองวงจรสมมูล (EEC)
บนรูปรูปที่ 3 แสดงแปลง Nyquist ทั่วไป (a และ b) และแปลง Bode (a ' และ b') สำหรับตัวอย่าง HDSS 2707 ตัวอย่างในอาหารเลี้ยงเชื้อที่ไม่มีชีวิตและน้ำซุป P. aeruginosa สำหรับเวลาฟักตัวที่แตกต่างกันเส้นผ่านศูนย์กลางของวงแหวน Nyquist จะลดลงเมื่อมี Pseudomonas aeruginosaแผนภาพ Bode (รูปที่ 3b') แสดงการเพิ่มขึ้นของความต้านทานรวมข้อมูลเกี่ยวกับค่าคงที่เวลาผ่อนคลายสามารถหาได้จากเฟสสูงสุดบนรูปรูปที่ 4 แสดงโครงสร้างทางกายภาพตามชั้นเดียว (a) และชั้นสองชั้น (b) และ EEC ที่เกี่ยวข้องCPE ได้รับการแนะนำในโมเดล EECการรับเข้าและความต้านทานของมันแสดงดังต่อไปนี้:
แบบจำลองทางกายภาพสองแบบและวงจรสมมูลที่สอดคล้องกันสำหรับการปรับสเปกตรัมอิมพีแดนซ์ของตัวอย่าง 2707 HDSS:
โดยที่ Y0 คือค่า KPI, j คือตัวเลขจินตภาพหรือ (-1)1/2, ω คือความถี่เชิงมุม, n คือดัชนีกำลัง KPI น้อยกว่า 135การผกผันของความต้านทานการถ่ายโอนประจุ (เช่น 1/Rct) สอดคล้องกับอัตราการกัดกร่อนRct ยิ่งเล็ก อัตราการกัดกร่อนก็จะยิ่งสูงขึ้น27หลังจากการฟักตัวเป็นเวลา 14 วัน Rct ของตัวอย่าง Pseudomonas aeruginosa สูงถึง 32 kΩ cm2 ซึ่งน้อยกว่า 489 kΩ cm2 ของตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีวภาพมาก (ตารางที่ 4)
ภาพ CLSM และภาพ SEM ในรูปที่ 5 แสดงให้เห็นอย่างชัดเจนว่าการเคลือบไบโอฟิล์มบนพื้นผิวของตัวอย่าง HDSS 2707 หลังจากผ่านไป 7 วันมีความหนาแน่นอย่างไรก็ตาม หลังจากผ่านไป 14 วัน แผ่นชีวะครอบคลุมได้ไม่ดีและมีเซลล์ที่ตายแล้วปรากฏขึ้นตารางที่ 5 แสดงความหนาของแผ่นชีวะบนตัวอย่าง HDSS 2707 ตัวอย่าง หลังจากได้รับเชื้อ P. aeruginosa เป็นเวลา 7 และ 14 วันความหนาฟิล์มชีวะสูงสุดเปลี่ยนจาก 23.4 µm หลังจาก 7 วันเป็น 18.9 µm หลังจาก 14 วันความหนาเฉลี่ยของแผ่นชีวะก็ยืนยันแนวโน้มนี้เช่นกันลดลงจาก 22.2 ± 0.7 μm หลังจาก 7 วัน เป็น 17.8 ± 1.0 μm หลังจาก 14 วัน
(a) ภาพ CLSM สามมิติที่ 7 วัน (b) ภาพ CLSM 3 มิติที่ 14 วัน (c) ภาพ SEM ที่ 7 วัน และ (d) ภาพ SEM ที่ 14 วัน
EMF เปิดเผยองค์ประกอบทางเคมีในแผ่นชีวะและผลิตภัณฑ์ที่มีการกัดกร่อนในตัวอย่างที่สัมผัสกับ P. aeruginosa เป็นเวลา 14 วันบนรูปรูปที่ 6 แสดงให้เห็นว่าปริมาณของ C, N, O และ P ในแผ่นชีวะและผลิตภัณฑ์ที่มีฤทธิ์กัดกร่อนนั้นสูงกว่าในโลหะบริสุทธิ์อย่างมีนัยสำคัญ เนื่องจากองค์ประกอบเหล่านี้เกี่ยวข้องกับแผ่นชีวะและสารเมตาบอไลต์ของพวกมันจุลินทรีย์ต้องการเพียงปริมาณโครเมียมและเหล็กเท่านั้นระดับ Cr และ Fe ที่สูงในแผ่นชีวะและผลิตภัณฑ์ที่มีการกัดกร่อนบนพื้นผิวของตัวอย่างบ่งชี้ว่าเมทริกซ์โลหะสูญเสียองค์ประกอบไปเนื่องจากการกัดกร่อน
หลังจากผ่านไป 14 วัน หลุมที่มีและไม่มี P. aeruginosa ถูกสังเกตพบในตัวกลาง 2216Eก่อนการฟักตัว พื้นผิวของตัวอย่างจะเรียบและไม่มีข้อบกพร่อง (รูปที่ 7a)หลังจากการฟักตัวและการกำจัดฟิล์มชีวะและผลิตภัณฑ์ที่มีการกัดกร่อน จะมีการตรวจสอบหลุมที่ลึกที่สุดบนพื้นผิวของตัวอย่างโดยใช้ CLSM ดังแสดงในรูปที่ 7b และ cไม่พบรูพรุนที่ชัดเจนบนพื้นผิวของสารควบคุมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพ (ความลึกของรูพรุนสูงสุด 0.02 µm)ความลึกของหลุมสูงสุดที่เกิดจากเชื้อ P. aeruginosa คือ 0.52 µm ที่ 7 วัน และ 0.69 µm ที่ 14 วัน โดยอิงตามความลึกของหลุมสูงสุดโดยเฉลี่ยจาก 3 ตัวอย่าง (เลือกความลึกของหลุมสูงสุด 10 ระดับสำหรับแต่ละตัวอย่าง)ความสำเร็จของ 0.42 ± 0.12 µm และ 0.52 ± 0.15 µm ตามลำดับ (ตารางที่ 5)ค่าความลึกของรูเหล่านี้มีขนาดเล็กแต่มีความสำคัญ
(a) ก่อนการสัมผัส (b) 14 วันในสภาพแวดล้อมที่ไม่มีสิ่งมีชีวิต และ (c) 14 วันในน้ำซุป Pseudomonas aeruginosa
บนรูปตารางที่ 8 แสดงสเปกตรัม XPS ของพื้นผิวตัวอย่างต่างๆ และองค์ประกอบทางเคมีที่วิเคราะห์สำหรับแต่ละพื้นผิวสรุปไว้ในตารางที่ 6 ในตารางที่ 6 เปอร์เซ็นต์อะตอมของ Fe และ Cr เมื่อมี P. aeruginosa (ตัวอย่าง A และ B) คือ ต่ำกว่าการควบคุมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพมาก(ตัวอย่าง C และ D)สำหรับตัวอย่าง P. aeruginosa เส้นโค้งสเปกตรัมที่ระดับนิวเคลียส Cr 2p ถูกปรับให้เข้ากับส่วนประกอบสูงสุดสี่องค์ประกอบที่มีพลังงานการจับ (BE) อยู่ที่ 574.4, 576.6, 578.3 และ 586.8 eV ซึ่งสามารถประกอบกับ Cr, Cr2O3, CrO3 .และ Cr(OH)3 ตามลำดับ (รูปที่ 9a และ b)สำหรับตัวอย่างที่ไม่ใช่ทางชีวภาพ สเปกตรัมของระดับ Cr 2p หลักประกอบด้วยพีคหลักสองค่าสำหรับ Cr (573.80 eV สำหรับ BE) และ Cr2O3 (575.90 eV สำหรับ BE) ในรูปที่9c และ d ตามลำดับความแตกต่างที่ชัดเจนที่สุดระหว่างตัวอย่างที่ไม่มีไบโอติกและตัวอย่าง P. aeruginosa คือการมี Cr6+ และสัดส่วนสัมพันธ์ที่สูงกว่าของ Cr(OH)3 (BE 586.8 eV) ใต้แผ่นชีวะ
สเปกตรัม XPS แบบกว้างของพื้นผิวของตัวอย่าง 2707 HDSS ในสื่อกลางสองชนิดคือ 7 และ 14 วัน ตามลำดับ
(a) การสัมผัสกับ P. aeruginosa เป็นเวลา 7 วัน (b) การสัมผัสกับ P. aeruginosa เป็นเวลา 14 วัน (c) 7 วันในสภาพแวดล้อมที่ไม่มีสิ่งมีชีวิต และ (d) 14 วันในสภาพแวดล้อมที่ไม่มีสิ่งมีชีวิต
HDSS มีความต้านทานการกัดกร่อนในระดับสูงในสภาพแวดล้อมส่วนใหญ่Kim และคณะ 2 รายงานว่า HDSS UNS S32707 ถูกระบุว่าเป็น DSS ที่มีอัลลอยด์สูงโดยมีค่า PREN มากกว่า 45 ค่า PREN ของตัวอย่าง 2707 HDSS ในงานนี้คือ 49 ซึ่งมีสาเหตุมาจากปริมาณโครเมียมสูงและปริมาณของ โมลิบดีนัมและนิกเกิลซึ่งมีประโยชน์ในสภาพแวดล้อมที่เป็นกรดและสภาพแวดล้อมที่มีปริมาณคลอไรด์สูงนอกจากนี้ องค์ประกอบที่มีความสมดุลและโครงสร้างจุลภาคที่ปราศจากข้อบกพร่องยังเป็นประโยชน์ต่อความเสถียรของโครงสร้างและความต้านทานการกัดกร่อนอย่างไรก็ตาม แม้จะมีความทนทานต่อสารเคมีที่ดีเยี่ยม แต่ข้อมูลการทดลองในงานนี้ชี้ให้เห็นว่า 2707 HDSS ไม่สามารถต้านทานต่อ MIC ของฟิล์มชีวะของ P. aeruginosa ได้อย่างสมบูรณ์
ผลลัพธ์ทางเคมีไฟฟ้าแสดงให้เห็นว่าอัตราการกัดกร่อนของ 2707 HDSS ในน้ำซุป P. aeruginosa เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญหลังจากผ่านไป 14 วัน เมื่อเทียบกับสภาพแวดล้อมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพในรูปที่ 2a พบว่า Eocp ลดลงทั้งในอาหารเลี้ยงเชื้อที่ไม่มีชีวิตและในน้ำซุป P. aeruginosa ในช่วง 24 ชั่วโมงแรกหลังจากนั้นแผ่นชีวะจะปกคลุมพื้นผิวของตัวอย่างอย่างสมบูรณ์ และ Eocp จะมีความเสถียรค่อนข้างมาก36อย่างไรก็ตาม ระดับ Eocp ทางชีวภาพนั้นสูงกว่าระดับ Eocp ที่ไม่ใช่ทางชีวภาพมากมีเหตุผลที่เชื่อได้ว่าความแตกต่างนี้เกี่ยวข้องกับการก่อตัวของแผ่นชีวะของ P. aeruginosaบนรูป2d เมื่อมี P. aeruginosa ค่า icorr 2707 HDSS สูงถึง 0.627 μA cm-2 ซึ่งเป็นลำดับความสำคัญที่สูงกว่าค่าควบคุมแบบ abiotic (0.063 μA cm-2) ซึ่งสอดคล้องกับค่า Rct ที่วัดได้ โดย EIS.ในช่วงสองสามวันแรก ค่าความต้านทานในน้ำซุป P. aeruginosa เพิ่มขึ้นเนื่องจากการเกาะติดของเซลล์ P. aeruginosa และการก่อตัวของแผ่นชีวะอย่างไรก็ตาม เมื่อแผ่นชีวะครอบคลุมพื้นผิวตัวอย่างอย่างสมบูรณ์ ความต้านทานจะลดลงชั้นป้องกันถูกโจมตีเป็นหลักเนื่องจากการก่อตัวของแผ่นชีวะและสารเมตาโบไลต์ของแผ่นชีวะส่งผลให้ความต้านทานการกัดกร่อนลดลงเมื่อเวลาผ่านไปและการเกาะตัวของ P. aeruginosa ทำให้เกิดการกัดกร่อนเฉพาะจุดแนวโน้มของสภาพแวดล้อมที่ไม่มีสิ่งมีชีวิตมีความแตกต่างกันความต้านทานการกัดกร่อนของการควบคุมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพสูงกว่าค่าที่สอดคล้องกันของตัวอย่างที่สัมผัสกับน้ำซุป P. aeruginosa มากนอกจากนี้ สำหรับการเข้าถึงแบบไม่มีชีวิต ค่า Rct 2707 HDSS สูงถึง 489 kΩ cm2 ในวันที่ 14 ซึ่งสูงกว่าค่า Rct (32 kΩ cm2) ถึง 15 เท่าเมื่อมี P. aeruginosaดังนั้น 2707 HDSS จึงมีความต้านทานการกัดกร่อนที่ดีเยี่ยมในสภาพแวดล้อมปลอดเชื้อ แต่ไม่สามารถต้านทาน MIC จากแผ่นชีวะของ P. aeruginosa ได้
ผลลัพธ์เหล่านี้สามารถสังเกตได้จากเส้นโค้งโพลาไรเซชันในรูปที่2b.การแตกแขนงของขั้วบวกมีความเกี่ยวข้องกับการก่อตัวของฟิล์มชีวะของ Pseudomonas aeruginosa และปฏิกิริยาออกซิเดชันของโลหะในกรณีนี้ ปฏิกิริยาแคโทดิกคือการลดออกซิเจนการมีอยู่ของ P. aeruginosa ช่วยเพิ่มความหนาแน่นของกระแสการกัดกร่อนอย่างมีนัยสำคัญ ซึ่งสูงกว่าการควบคุมแบบไม่ใช้ชีวะประมาณลำดับความสำคัญสิ่งนี้บ่งชี้ว่าฟิล์มชีวะของ P. aeruginosa ช่วยเพิ่มการกัดกร่อนเฉพาะจุดของ 2707 HDSSหยวน และคณะ พบว่าความหนาแน่นกระแสการกัดกร่อนของโลหะผสม Cu-Ni 70/30 เพิ่มขึ้นภายใต้การกระทำของฟิล์มชีวะของ P. aeruginosaอาจเกิดจากการเร่งปฏิกิริยาทางชีวภาพของการลดออกซิเจนโดยแผ่นชีวะของ Pseudomonas aeruginosaการสังเกตนี้อาจอธิบาย MIC 2707 HDSS ในงานนี้ด้วยนอกจากนี้อาจมีออกซิเจนน้อยลงภายใต้แผ่นชีวะแบบแอโรบิกดังนั้นการปฏิเสธที่จะเปลี่ยนพื้นผิวโลหะด้วยออกซิเจนอาจเป็นปัจจัยที่มีส่วนทำให้ MIC ในงานนี้
ดิกคินสันและคณะฉบับที่ 38 แนะนำว่าอัตราของปฏิกิริยาเคมีและเคมีไฟฟ้าอาจได้รับผลกระทบโดยตรงจากกิจกรรมเมตาบอลิซึมของแบคทีเรียที่นั่งบนพื้นผิวตัวอย่างและธรรมชาติของผลิตภัณฑ์ที่มีการกัดกร่อนดังที่แสดงในรูปที่ 5 และตารางที่ 5 จำนวนเซลล์และความหนาของฟิล์มชีวะลดลงหลังจาก 14 วันสิ่งนี้สามารถอธิบายได้อย่างสมเหตุสมผลด้วยข้อเท็จจริงที่ว่าหลังจากผ่านไป 14 วัน เซลล์เซสไซล์ส่วนใหญ่บนพื้นผิวของ 2707 HDSS เสียชีวิตเนื่องจากการขาดแคลนสารอาหารในตัวกลาง 2216E หรือการปล่อยไอออนของโลหะที่เป็นพิษออกจากเมทริกซ์ 2707 HDSSนี่เป็นข้อจำกัดของการทดสอบแบบกลุ่ม
ในงานนี้ แผ่นชีวะของ P. aeruginosa มีส่วนทำให้ Cr และ Fe หายไปในท้องถิ่นภายใต้แผ่นชีวะบนพื้นผิวของ 2707 HDSS (รูปที่ 6)ตารางที่ 6 แสดงการลดลงของ Fe และ Cr ในตัวอย่างที่ D เมื่อเปรียบเทียบกับตัวอย่าง C ซึ่งบ่งชี้ว่า Fe และ Cr ที่ละลายซึ่งเกิดจากฟิล์มชีวะของ P. aeruginosa ยังคงอยู่ในช่วง 7 วันแรกสภาพแวดล้อม 2216E ใช้เพื่อจำลองสภาพแวดล้อมทางทะเลประกอบด้วย Cl- 17,700 ppm ซึ่งเทียบได้กับเนื้อหาในน้ำทะเลธรรมชาติการมีอยู่ของ 17,700 ppm Cl- เป็นสาเหตุหลักที่ทำให้ Cr ลดลงในตัวอย่าง abiotic 7 และ 14 วันที่วิเคราะห์โดย XPSเมื่อเปรียบเทียบกับตัวอย่าง P. aeruginosa การละลายของ Cr ในตัวอย่างที่ไม่มีชีวิตมีค่าน้อยกว่ามากเนื่องจากมีความต้านทานที่แข็งแกร่งของ 2707 HDSS ต่อคลอรีนภายใต้สภาวะที่ไม่มีชีวิตบนรูป9 แสดงการมีอยู่ของ Cr6+ ในภาพยนตร์ที่สร้างฟิล์มอาจเกี่ยวข้องกับการกำจัดโครเมียมออกจากพื้นผิวเหล็กด้วยแผ่นชีวะของ P. aeruginosa ตามที่ Chen และ Clayton แนะนำ
เนื่องจากการเจริญเติบโตของแบคทีเรีย ค่า pH ของอาหารก่อนและหลังการเพาะปลูกคือ 7.4 และ 8.2 ตามลำดับดังนั้น ด้านล่างฟิล์มชีวะของ P. aeruginosa การกัดกร่อนของกรดอินทรีย์ไม่น่าจะมีส่วนช่วยในงานนี้ เนื่องจากค่า pH ที่ค่อนข้างสูงในตัวกลางจำนวนมากpH ของตัวกลางควบคุมที่ไม่ใช่ทางชีวภาพไม่เปลี่ยนแปลงอย่างมีนัยสำคัญ (จาก 7.4 เริ่มต้นไปจนถึง 7.5 สุดท้าย) ในระหว่างช่วงการทดสอบ 14 วันการเพิ่มขึ้นของ pH ในอาหารเลี้ยงเชื้อหลังการฟักตัวมีความสัมพันธ์กับกิจกรรมการเผาผลาญของ P. aeruginosa และพบว่ามีผลเช่นเดียวกันกับ pH ในกรณีที่ไม่มีแถบทดสอบ
ดังที่แสดงในรูปที่ 7 ความลึกของหลุมสูงสุดที่เกิดจากฟิล์มชีวะของ P. aeruginosa คือ 0.69 µm ซึ่งมากกว่าความลึกของตัวกลางที่ไม่มีชีวิตมาก (0.02 µm)ซึ่งสอดคล้องกับข้อมูลเคมีไฟฟ้าที่อธิบายไว้ข้างต้นความลึกของหลุมที่ 0.69 µm นั้นน้อยกว่าค่า 9.5 µm ที่รายงานสำหรับ 2205 DSS มากกว่าสิบเท่าภายใต้เงื่อนไขเดียวกันข้อมูลเหล่านี้แสดงให้เห็นว่า 2707 HDSS มีความต้านทานต่อ MIC ได้ดีกว่า 2205 DSSสิ่งนี้ไม่ควรเป็นเรื่องที่น่าประหลาดใจเนื่องจาก 2707 HDSS มีระดับ Cr ที่สูงกว่า ซึ่งให้การสร้างฟิล์มได้นานขึ้น การกำจัด P. aeruginosa ได้ยากขึ้น และเนื่องจากโครงสร้างเฟสที่สมดุลโดยไม่มีการตกตะกอนทุติยภูมิที่เป็นอันตรายทำให้เกิดหลุม
โดยสรุป พบหลุม MIC บนพื้นผิวของ 2707 HDSS ในน้ำซุป P. aeruginosa เมื่อเปรียบเทียบกับหลุมที่ไม่มีนัยสำคัญในสภาพแวดล้อมที่ไม่มีสิ่งมีชีวิตงานนี้แสดงให้เห็นว่า 2707 HDSS มีความต้านทานต่อ MIC ได้ดีกว่า 2205 DSS แต่ไม่สามารถต้านทาน MIC ได้อย่างสมบูรณ์เนื่องจากฟิล์มชีวะของ P. aeruginosaผลลัพธ์เหล่านี้ช่วยในการเลือกสเตนเลสสตีลที่เหมาะสมและอายุขัยสำหรับสภาพแวดล้อมทางทะเล
คูปองสำหรับ 2707 HDSS จัดทำโดย Northeastern University (NEU) School of Metallurgy ในเมืองเสิ่นหยาง ประเทศจีนองค์ประกอบองค์ประกอบของ 2707 HDSS แสดงอยู่ในตารางที่ 1 ซึ่งวิเคราะห์โดยแผนกวิเคราะห์และทดสอบวัสดุของ NEUตัวอย่างทั้งหมดได้รับการบำบัดด้วยสารละลายของแข็งที่ 1180°C เป็นเวลา 1 ชั่วโมงก่อนการทดสอบการกัดกร่อน 2707 HDSS รูปทรงเหรียญที่มีพื้นที่ผิวเปิดด้านบน 1 ซม.2 ได้รับการขัดให้เป็น 2000 กรวดด้วยกระดาษทรายซิลิคอนคาร์ไบด์ จากนั้นขัดด้วยผงสารละลาย Al2O3 0.05 µmด้านข้างและด้านล่างได้รับการปกป้องด้วยสีเฉื่อยหลังจากการอบแห้ง ตัวอย่างถูกล้างด้วยน้ำปราศจากไอออนและฆ่าเชื้อด้วยเอทานอล 75% (ปริมาตร/ปริมาตร) เป็นเวลา 0.5 ชั่วโมงจากนั้นนำไปตากให้แห้งด้วยแสงอัลตราไวโอเลต (UV) เป็นเวลา 0.5 ชั่วโมงก่อนใช้งาน
Marine Pseudomonas aeruginosa สายพันธุ์ MCCC 1A00099 ถูกซื้อจากศูนย์รวบรวมวัฒนธรรมทางทะเลเซียะเหมิน (MCCC) ประเทศจีนPseudomonas aeruginosa ปลูกภายใต้สภาวะแอโรบิกที่อุณหภูมิ 37 ° C ในขวดขนาด 250 มล. และเซลล์ไฟฟ้าเคมีแก้ว 500 มล. โดยใช้สื่อของเหลว Marine 2216E (Qingdao Hope Biotechnology Co., Ltd., ชิงเต่า, จีน)สื่อประกอบด้วย (กรัม/ลิตร): 19.45 NaCl, 5.98 MgCl2, 3.24 Na2SO4, 1.8 CaCl2, 0.55 KCl, 0.16 Na2CO3, 0.08 KBr, 0.034 SrCl2, 0.08 SrBr2 , 0.022 H3BO3, 0.004 NaSiO3, 0016 NH26NH3, 3.0016 NH3 5.0 เปปโตน, 1.0 สารสกัดจากยีสต์และเหล็กซิเตรต 0.1นึ่งที่อุณหภูมิ 121°C เป็นเวลา 20 นาทีก่อนทำการเพาะเชื้อนับเซลล์นั่งและแพลงก์ตอนด้วยเครื่องวัดเม็ดเลือดใต้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงที่กำลังขยาย 400 เท่าความเข้มข้นเริ่มต้นของ Planktonic Pseudomonas aeruginosa ทันทีหลังการฉีดวัคซีนคือประมาณ 106 เซลล์/มล.
การทดสอบเคมีไฟฟ้าดำเนินการในเซลล์แก้วสามขั้วแบบคลาสสิกซึ่งมีปริมาตรปานกลาง 500 มล.แผ่นแพลตตินัมและอิเล็กโทรดคาโลเมลอิ่มตัว (SAE) เชื่อมต่อกับเครื่องปฏิกรณ์ผ่านเส้นเลือดฝอย Luggin ที่เต็มไปด้วยสะพานเกลือ ซึ่งทำหน้าที่เป็นอิเล็กโทรดตัวนับและอิเล็กโทรดอ้างอิงตามลำดับสำหรับการผลิตอิเล็กโทรดใช้งาน ลวดทองแดงหุ้มยางจะถูกติดไว้กับแต่ละตัวอย่างและหุ้มด้วยอีพอกซีเรซิน โดยเหลือพื้นที่ที่ไม่มีการป้องกันไว้ประมาณ 1 ตารางเซนติเมตรสำหรับอิเล็กโทรดทำงานที่ด้านหนึ่งในระหว่างการตรวจวัดเคมีไฟฟ้า ตัวอย่างจะถูกวางในตัวกลาง 2216E และเก็บไว้ที่อุณหภูมิการฟักตัวคงที่ (37°C) ในอ่างน้ำOCP, LPR, EIS และข้อมูลโพลาไรซ์ไดนามิกที่เป็นไปได้ถูกวัดโดยใช้โพเทนชิโอสแตต Autolab (อ้างอิง 600TM, Gamry Instruments, Inc., USA)การทดสอบ LPR ได้รับการบันทึกที่อัตราการสแกน 0.125 มิลลิโวลต์ s-1 ในช่วง -5 ถึง 5 มิลลิโวลต์ ด้วย Eocp และอัตราการสุ่มตัวอย่าง 1 เฮิร์ตซ์EIS ดำเนินการด้วยคลื่นไซน์ในช่วงความถี่ 0.01 ถึง 10,000 เฮิร์ตซ์ โดยใช้แรงดันไฟฟ้าที่ใช้ 5 มิลลิโวลต์ที่ Eocp ในสถานะคงตัวก่อนการกวาดล้างที่อาจเกิดขึ้น อิเล็กโทรดจะอยู่ในโหมดไม่ได้ใช้งานจนกระทั่งถึงค่าที่เสถียรของศักยภาพในการกัดกร่อนอย่างอิสระจากนั้นกราฟโพลาไรเซชันจะถูกวัดตั้งแต่ -0.2 ถึง 1.5 V ตามฟังก์ชันของ Eocp ที่อัตราการสแกน 0.166 มิลลิโวลต์/วินาทีการทดสอบแต่ละครั้งทำซ้ำ 3 ครั้งโดยมีและไม่มี P. aeruginosa
ตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์ทางโลหะวิทยาถูกขัดเชิงกลด้วยกระดาษ SiC กรวด 2000 แบบเปียก จากนั้นขัดเพิ่มเติมด้วยสารแขวนลอย Al2O3 0.05 µm เพื่อการสังเกตด้วยแสงการวิเคราะห์ทางโลหะวิทยาดำเนินการโดยใช้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงตัวอย่างถูกแกะสลักด้วยสารละลาย 10 % โดยน้ำหนักของโพแทสเซียม ไฮดรอกไซด์ 43
หลังจากการบ่ม ตัวอย่างจะถูกล้าง 3 ครั้งด้วยน้ำเกลือบัฟเฟอร์ฟอสเฟต (PBS) (pH 7.4 ± 0.2) จากนั้นตรึงด้วยกลูตาราลดีไฮด์ 2.5% (ปริมาตร/ปริมาตร) เป็นเวลา 10 ชั่วโมงเพื่อตรึงแผ่นชีวะจากนั้นทำให้แห้งด้วยเอทานอลแบบแบทช์ (50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 95% และ 100% โดยปริมาตร) ก่อนทำให้แห้งด้วยอากาศสุดท้าย ฟิล์มทองคำจะเกาะอยู่บนพื้นผิวของตัวอย่างเพื่อให้เกิดการนำไฟฟ้าสำหรับการสังเกต SEMภาพ SEM ถูกเน้นไปที่จุดที่มีเซลล์ P. aeruginosa ที่มีการนั่งมากที่สุดบนพื้นผิวของแต่ละตัวอย่างทำการวิเคราะห์ EDS เพื่อค้นหาองค์ประกอบทางเคมีใช้กล้องจุลทรรศน์เลเซอร์สแกนคอนโฟคอล Zeiss (CLSM) (LSM 710, Zeiss, เยอรมนี) เพื่อวัดความลึกของหลุมเพื่อสังเกตหลุมการกัดกร่อนใต้แผ่นชีวะ ตัวอย่างทดสอบจะถูกทำความสะอาดเป็นครั้งแรกตามมาตรฐานแห่งชาติของจีน (CNS) GB/T4334.4-2000 เพื่อกำจัดผลิตภัณฑ์ที่มีการกัดกร่อนและแผ่นชีวะออกจากพื้นผิวของตัวอย่างทดสอบ
การวิเคราะห์เอ็กซ์เรย์โฟโตอิเล็กตรอนสเปกโทรสโกปี (XPS, ระบบวิเคราะห์พื้นผิว ESCALAB250, Thermo VG, สหรัฐอเมริกา) การวิเคราะห์ดำเนินการโดยใช้แหล่งกำเนิดรังสีเอกซ์แบบเอกรงค์เดียว (เส้นอะลูมิเนียมKαที่มีพลังงาน 1,500 eV และกำลัง 150 W) ในช่วงกว้างของ พลังงานยึดเหนี่ยว 0 ภายใต้สภาวะมาตรฐาน –1350 eVสเปกตรัมความละเอียดสูงถูกบันทึกโดยใช้พลังงานการส่งผ่าน 50 eV และขั้นละ 0.2 eV
ตัวอย่างที่ฟักตัวถูกกำจัดออกและล้างเบาๆ ด้วย PBS (pH 7.4 ± 0.2) เป็นเวลา 15 วินาที45เพื่อสังเกตความมีชีวิตของแบคทีเรียของแผ่นชีวะในตัวอย่าง แผ่นชีวะถูกย้อมโดยใช้ชุดความมีชีวิตของแบคทีเรีย BacLight LIVE/DEAD (Invitrogen, Eugene, OR, USA)ชุดประกอบด้วยสีย้อมฟลูออเรสเซนต์ 2 สี: สีย้อมฟลูออเรสเซนต์สีเขียว SYTO-9 และสีย้อมฟลูออเรสเซนต์โพรพิเดียมไอโอไดด์ (PI) สีแดงใน CLSM จุดเรืองแสงสีเขียวและสีแดงแสดงถึงเซลล์ที่มีชีวิตและเซลล์ที่ตายแล้วตามลำดับสำหรับการย้อมสี ส่วนผสม 1 มิลลิลิตรที่ประกอบด้วย SYTO-9 3 ไมโครลิตร และสารละลาย PI 3 ไมโครลิตร ถูกบ่มเป็นเวลา 20 นาทีที่อุณหภูมิห้อง (23°C) ในความมืดหลังจากนั้น ตัวอย่างที่เปื้อนสีจะถูกตรวจสอบที่ความยาวคลื่นสองช่วง (488 นาโนเมตรสำหรับเซลล์ที่มีชีวิตและ 559 นาโนเมตรสำหรับเซลล์ที่ตายแล้ว) โดยใช้อุปกรณ์ Nikon CLSM (C2 Plus, Nikon, ญี่ปุ่น)วัดความหนาของแผ่นชีวะในโหมดสแกน 3 มิติ
วิธีอ้างอิงบทความนี้: Li, H. และคณะการกัดกร่อนของจุลินทรีย์ของเหล็กกล้าไร้สนิมซูเปอร์ดูเพล็กซ์ 2707 โดยฟิล์มชีวะทางทะเล Pseudomonas aeruginosaวิทยาศาสตร์.6 ก.ย. 2562 ดอย: 10.1038/srep20190 (2016)
Zanotto, F., Grassi, V., Balbo, A., Monticelli, C. & Zucchi, F. การแตกร้าวของการกัดกร่อนจากความเครียดของเหล็กกล้าไร้สนิมดูเพล็กซ์ LDX 2101 ในสารละลายคลอไรด์เมื่อมีไทโอซัลเฟต Zanotto, F., Grassi, V., Balbo, A., Monticelli, C. & Zucchi, F. การแตกร้าวของการกัดกร่อนจากความเครียดของเหล็กกล้าไร้สนิมดูเพล็กซ์ LDX 2101 ในสารละลายคลอไรด์เมื่อมีไทโอซัลเฟต Zanotto, F., Grassi, V., Balbo, A., Monticelli, C. & Zucchi, F. Коррозионное растрескивание под напряжением дуплексной нержавеющей стали LDX 2101 рах хлоридов в присутствии тиосульфата. Zanotto, F., Grassi, V., Balbo, A., Monticelli, C. & Zucchi, F. การแตกร้าวของการกัดกร่อนจากความเครียดของเหล็กกล้าไร้สนิมดูเพล็กซ์ LDX 2101 ในสารละลายคลอไรด์เมื่อมีไธโอซัลเฟต Zanotto, F., Grassi, V., Balbo, A., Monticelli, C. & Zucchi, F. LDX 2101 双相不锈钢在硫代硫酸盐存在下氯化物溶液中的应力腐蚀酸盐存在下氯化物溶液中的应力腐蚀酐蚀盂。 Zanotto, F., Grassi, V., Balbo, A., Monticelli, C. & Zucchi, F. LDX 2101 双相stainless steel在福代sulfate分下下南性性生于中文剧情的裂。 Zanotto, F., Grassi, V., Balbo, A., Monticelli, C. & Zucchi, F. Коррозионное растрескивание под напряжением дуплексной нержавеющей стали LDX 2101 ре хлорида в присутствии тиосульфата. Zanotto, F., Grassi, V., Balbo, A., Monticelli, C. & Zucchi, F. การแตกร้าวของการกัดกร่อนจากความเครียดของเหล็กกล้าไร้สนิมดูเพล็กซ์ LDX 2101 ในสารละลายคลอไรด์เมื่อมีไธโอซัลเฟตวิทยาศาสตร์คอรอส 80, 205–212 (2014)
Kim, ST, Jang, SH, Lee, IS & Park, YS ผลของการบำบัดความร้อนด้วยสารละลายและไนโตรเจนในการป้องกันก๊าซต่อความต้านทานต่อการกัดกร่อนแบบรูพรุนของการเชื่อมเหล็กกล้าไร้สนิมไฮเปอร์ดูเพล็กซ์ Kim, ST, Jang, SH, Lee, IS & Park, YS ผลของการบำบัดความร้อนด้วยสารละลายและไนโตรเจนในการป้องกันก๊าซต่อความต้านทานต่อการกัดกร่อนแบบรูพรุนของการเชื่อมเหล็กกล้าไร้สนิมไฮเปอร์ดูเพล็กซ์Kim, ST, Jang, SH, Lee, IS และ Park, YS ผลของการบำบัดความร้อนด้วยสารละลายของแข็งและไนโตรเจนในก๊าซป้องกันต่อความต้านทานการกัดกร่อนแบบรูพรุนของรอยเชื่อมสแตนเลสไฮเปอร์ดูเพล็กซ์ Kim, ST, Jang, SH, Lee, IS & Park, YS 固溶热处理和保护气体中的氮气对超双相不锈钢焊缝抗点蚀性能的影响。 คิม, ST, จาง, SH, ลี, ไอเอส & ปาร์ค, YSKim, ST, Jang, SH, Lee, IS และ Park, YS ผลของการบำบัดความร้อนด้วยสารละลายและไนโตรเจนในก๊าซป้องกันต่อความต้านทานการกัดกร่อนแบบรูพรุนของการเชื่อมเหล็กกล้าไร้สนิมซูเปอร์ดูเพล็กซ์โครอสวิทยาศาสตร์.53, 1939–1947 (2011)
Shi, X., Avci, R., Geiser, M. & Lewandowski, Z. การศึกษาเปรียบเทียบทางเคมีของสเตนเลส 316L ที่เกิดจากจุลินทรีย์และไฟฟ้าเคมี Shi, X., Avci, R., Geiser, M. & Lewandowski, Z. การศึกษาเปรียบเทียบทางเคมีของสเตนเลส 316L ที่เกิดจากจุลินทรีย์และไฟฟ้าเคมีShi, X. , Avchi, R. , Geyser, M. และ Lewandowski, Z. การศึกษาทางเคมีเปรียบเทียบของบ่อทางจุลชีววิทยาและเคมีไฟฟ้าของสแตนเลส 316L Shi, X., Avci, R., Geiser, M. & Lewandowski, Z. 微生物和电化学诱导的316L 不锈钢点蚀的化学比较研究。 Shi, X., Avci, R., Geiser, M. & Lewandowski, Z.Shi, X. , Avchi, R. , Geyser, M. และ Lewandowski, Z. การศึกษาทางเคมีเปรียบเทียบของรูพรุนที่เกิดจากจุลชีววิทยาและเคมีไฟฟ้าในสแตนเลส 316Lโครอสวิทยาศาสตร์.45, 2577–2595 (2546)
Luo, H., Dong, CF, Li, XG & Xiao, K. พฤติกรรมเคมีไฟฟ้าของสเตนเลสดูเพล็กซ์ 2205 ในสารละลายอัลคาไลน์ที่มีค่า pH ต่างกันเมื่อมีคลอไรด์ Luo, H., Dong, CF, Li, XG & Xiao, K. พฤติกรรมเคมีไฟฟ้าของสเตนเลสดูเพล็กซ์ 2205 ในสารละลายอัลคาไลน์ที่มีค่า pH ต่างกันเมื่อมีคลอไรด์Luo H., Dong KF, Lee HG และ Xiao K. พฤติกรรมเคมีไฟฟ้าของดูเพล็กซ์สแตนเลส 2205 ในสารละลายอัลคาไลน์ที่มีค่า pH ต่างกันเมื่อมีคลอไรด์ Luo, H., Dong, CF, Li, XG & Xiao, K. 2205 双相不锈钢在氯化物存在下不同pH 碱性溶液中的电化学行为。 Luo, H., Dong, CF, Li, XG & Xiao, K. 2205 พฤติกรรมเคมีไฟฟ้าของเหล็กกล้าไร้สนิม 双相 เมื่อมีคลอไรด์ที่ pH ต่างกันในสารละลายอัลคาไลน์Luo H., Dong KF, Lee HG และ Xiao K. พฤติกรรมเคมีไฟฟ้าของดูเพล็กซ์สแตนเลส 2205 ในสารละลายอัลคาไลน์ที่มีค่า pH ต่างกันเมื่อมีคลอไรด์อิเล็กโทรเคมี.นิตยสาร.64, 211–220 (2012)
Little, BJ, Lee, JS & Ray, RI อิทธิพลของแผ่นชีวะทางทะเลต่อการกัดกร่อน: บทวิจารณ์โดยย่อ Little, BJ, Lee, JS & Ray, RI อิทธิพลของแผ่นชีวะทางทะเลต่อการกัดกร่อน: บทวิจารณ์โดยย่อLittle, BJ, Lee, JS และ Ray, RI ผลของแผ่นชีวะทางทะเลต่อการกัดกร่อน: การทบทวนโดยย่อ Little, BJ, Lee, JS & Ray, RI 海洋生物膜对腐蚀的影响：简明综述。 ลิตเติ้ล, บีเจ, ลี, JS และเรย์, RILittle, BJ, Lee, JS และ Ray, RI ผลของแผ่นชีวะทางทะเลต่อการกัดกร่อน: การทบทวนโดยย่ออิเล็กโทรเคมี.นิตยสาร.54, 2-7 (2551)